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選擇并制備合適的親和吸附劑是親和層析的關鍵步驟之一。它包括基質和配體的選擇、基質的活化、配體與基質的偶聯等等。
基質
基質的性質
基質構成固定相的骨架，親和層析的基質應該具有以下一些性質：
1.具有較好的物理化學穩定性。在與配體偶聯、層析過程中配體與待分離物結合、以及洗脫時的pH、離子強度等條件下，基質的性質都沒有明顯的改變。
2.能夠和配體穩定的結合。親和層析的基質應具有較多的化學活性基團，通過一定的化學處理能夠與配體穩定的共價結合，并且結合后不改變基質和配體的基本性質。
3.基質的結構應是均勻的多孔網狀結構。以使被分離的生物分子能夠均勻、穩定的通透，并充分與配體結合。基質的孔徑過小會增加基質的排阻效應，使被分離物與配體結合的機率下降，降低親和層析的吸附容量。所以一般來說，多選擇較大孔徑的基質，以使待分離物有充分的空間與配體結合。
4.基質本身與樣品中的各個組分均沒有明顯的非特異性吸附，不影響配體與待分離物的結合。基質應具有較好的親水性，以使生物分子易于靠近并與配體作用。
一般纖維素以及交聯葡聚糖、瓊脂糖、聚丙烯酰胺、多孔玻璃珠等用于凝膠排阻層析的凝膠都可以作為親和層析的基質，其中以瓊脂糖凝膠應用為廣泛。纖維素價格低，可利用的活性基團較多，但它對蛋白質等生物分子可能有明顯的非特異性吸附作用，另外它的穩定性和均一性也較差。交聯葡聚糖和聚丙烯酰胺的物理化學穩定性較好，但它們的孔徑相對比較小，而且孔徑的穩定性不好，可能會在與配體偶聯時有較大的降低，不利待分離物與配體充分結合，只有大孔徑型號凝膠可以用于親和層析。多孔玻璃珠的特點是機械強度好，化學穩定性好。但它可利用的活性基團較少，對蛋白質等生物分子也有較強的吸附作用。瓊脂糖凝膠則基本可以較好的滿足上述四個條件，它具有非特異性吸附低、穩定性好、孔徑均勻適當、宜于活化等優點，因此得到了廣泛的應用。瓊脂糖凝膠微球的商品名為Sepharose，含糖濃度為2%、4%、6%時分別稱為2B、4B、6B。因為Sepharose 4B的結構比6B疏松，而吸附容量比2B大，所以4B應用廣。
基質的活化
基質的活化是指通過對基質進行一定的化學處理，使基質表面上的一些化學基團轉變為易于和特定配體結合的活性基團。配體和基質的偶聯，通常首先要進行基質的活化。
多糖基的活化
多糖基質尤其是瓊脂糖是一種常用的基質。瓊脂糖通常含有大量的羥基，通過一定的處理可以引入各種適宜的活性基團。瓊脂糖的活化方法很多，下面介紹一些常用的活性基團及活化方法。
1.溴化氰活化
溴化氰活化法是常用的活化方法之一，活化過程主要是生成亞胺碳酸活性基團，它可以和伯氨基（NH2）反應，主要生成異脲衍生物。
溴化氰活化的基質可以在溫和的條件下與配體結合，結合的配體量大。利用溴化氰活化的基質通過進一步處理還可以得到很多其它的衍生物。這種方法的缺點是溴化氰活化法的基質和配體偶聯后生成的異脲衍生物中氨基的pKa＝10.4，所以通常會帶一定的正電荷，從而使基質可能有陰離子離子交換作用，增大了非特異性吸附，影響親和層析的分辨率。另外溴化氰活化的基質與配體結合不夠穩定，尤其是當與小配體結合時，可能會出現配體脫落現象。另外溴化氰you劇毒、易揮發，所以操作不便。
2.環氧乙烷基活化
這類方法活化后的基質都含有環氧乙烷基。如在含有NaBH4的堿性條件下，1，4－丁二醇－雙縮水甘油醚的一個環氧乙烷基可以與羥基反應，而將另一個環氧乙烷基結合在基質上。另外也可以用環氧氯丙烷活化，將環氧乙烷基結合在基質上。
這種活化方法的優點是活化后不引入電荷基團，而且基質與配體形成的N－C、O－C和S－C鍵都很穩定，所以配體與基質結合緊密，親和吸附劑使用壽命長，而且便于在親和層析中使用較強烈的洗脫手段，另外這種處理方法沒有溴化氰的毒性。它的缺點是用環氧乙基活化的基質在與配體偶聯時需要堿性條件，pH為9~13，溫度為20~40? C。這樣的條件對于一些比較敏感的配體可能不適用。
上面兩種方法是比較常用的方法，另外還有很多種活化方法如：N－羥基琥珀酰亞胺（NHS）活化、三嗪（triazine）活化、高碘酸鹽（periodate）活化、羰酰二咪唑（carbonyldiimidazole）活化、2,4,6－三氟5－氯吡啶（FCP）活化、乙二酸酰肼（adipic acid dihydrazide）活化、二乙xi砜（divinylsulfone）活化等，總之，目前對基質的活化方法很多，各有其特點，應根據實際需要選擇適當的活化方法。
聚丙烯酰胺的活化
聚丙烯酰胺凝膠有大量的甲酰胺基，可以通過對甲酰胺基的修飾而對聚丙烯酰胺凝膠進行活化。一般有以下三種方式：氨乙基化作用、肼解作用和堿解作用。另外在偶聯蛋白質配體時也通常用戊二醛活化聚丙烯酰胺凝膠。
多孔玻璃珠的活化
對于多孔玻璃珠等無機凝膠的活化通常采用硅烷化試劑與玻璃反應生成烷基胺－玻璃，在多孔玻璃上引進氨基，再通過這些氨基進一步反應引入活性基團，與適當的配體偶聯。
間隔臂分子
在親和層析中，由于配體結合在基質上，它在與待分離的生物大分子結合時，很大程度上要受到基質和待分離的生物大分子間的空間位阻效應的影響。尤其是當配體較小或待分離的生物大分子較大時，由于直接結合在基質上的小分子配體非常靠近基質，而待分離的生物大分子由于受到基質的空間障礙，使得其與配體結合的部位無法接近配體，影響了待分離的生物大分子與配體的結合，造成吸附量的降低。解決這一問題的方法通常是在配體和基質之間引入適當長度的“間隔臂”，即加入一段有機分子，使基質上的配體離開基質的骨架向外擴展伸長，這樣就可以減少空間位阻效應，大大增加配體對待分離的生物大分子的吸附效率。加入手臂的長度要恰當，太短則效果不明顯；太長則容易造成彎曲，反而降低吸附效率。
引入間隔臂分子常用的方法是將適當長度的氨基化合物NH2 (CH2)n R共價結合到活化的基質上，R通常是氨基或羧基，n一般為2－12。例如Pharmacia公司生產的AH－Sepharose 4B和CH－Sepharose 4B就是分別將1,6－乙二胺，6－氨基乙酸與CNBr活化的瓊脂糖反應引入間隔臂分子。二者的末端分別為氨基或羧基，通過碳二亞胺的縮合作用可以分別與含羧基或氨基的配體偶聯。
另外也可以通過進一步的活化處理，生成N－羥基琥珀酰亞胺酯、環氧基等活性基團直接與各種配體偶聯。引入間隔臂的基質與配體結合時，配體就可以離開基質一定的空間，從而可以減少空間位阻效應，易于與待分離物質結合。
配體
配體的性質
親和層析是利用配體和待分離物質的親和力而進行分離純化的，所以選擇合適的配體對于親和層析的分離效果是非常重要的。理想的配體應具有以下一些性質：
1.配體與待分離的物質有適當的親和力。親和力太弱，待分離物質不易與配體結合，造成親和層析吸附效率很低。而且吸附洗脫過程中易受非特異性吸附的影響，引起分辨率下降。但如果親和力太強，待分離物質很難與配體分離，這又會造成洗脫的困難。總之，配體和待分離物質的親和力過弱或過強都不利于親和層析的分離。應根據實驗要求盡量選擇與待分離物質具有適當的親和力的配體。
2.配體與待分離的物質之間的親和力要有較強的特異性，也就是說配體與待分離物質有適當的親和力，而與樣品中其它組分沒有明顯的親和力，對其它組分沒有非特異性吸附作用。這是保證親和層析具有高分辨率的重要因素。
3.配體要能夠與基質穩定的共價結合，在實驗過程中不易脫落，并且配體與基質偶聯后，對其結構沒有明顯改變，尤其是偶聯過程不涉及配體中與待分離物質有親和力的部分，對二者的結合沒有明顯影響。
4.配體自身應具有較好的穩定性，在實驗中能夠耐受偶聯以及洗脫時可能的的較劇烈的條件，可以多次重復使用。
*上述條件的配體實際上很難找到，在實驗中應根據具體的條件來選擇盡量滿足上述條件的適宜的配體。
根據配體對待分離物質的親和性的不同，可以將其分為兩類：特異性配體（specific ligand）和通用性配體（general ligand）。特異性配體一般是指只與單一或很少種類的蛋白質等生物大分子結合的配體。如生物素和親和素、抗原和抗體、酶和它的抑制劑、激素－受體等，它們結合都具有很高的特異性，用這些物質作為配體都屬于特異性配體。配體的特異性是保證親和層析高分辨率的重要因素，但尋找特異性配體一般是比較困難的，尤其對于一些性質不很了解的生物大分子，要找到合適的特異性配體通常需要大量的實驗。解決這一問題的方法是使用通用性的配體。通用性配體一般是指特異性不是很強，能和某一類的蛋白質等生物大分子結合的配體，如各種凝集素（lectine）可以結合各種糖蛋白，核酸可以結合RNA、結合RNA的蛋白質等。通用性配體對生物大分子的專一性雖然不如特異性配體，但通過選擇合適的洗脫條件也可以得到很高的分辨率。而且這些配體還具有結構穩定、偶聯率高、吸附容量高、易于洗脫、價格便宜等優點，所以在實驗中得到了廣泛的應用。
配體與基質的偶聯
除了前面已經介紹了基質的一些活化基團外，通過對活化基質的進一步處理，還可以得到更多種類的活性基團。這些活性基團可以在較溫和的條件下與含氨基、羧基醛基、酮基、羥基、硫醇基等多種配體反應，使配體偶聯在基質上。另外通過碳二亞胺、戊二醛等雙功能試劑的作用也可以使配體與基質偶聯。以上這些方法使得幾乎任何一種配體都可以找到適當的方法與基質偶聯。關于配體和基質偶聯的具體實驗操作可以參閱本書后面的實驗部分或相應的參考文獻。
配體和基質偶聯完畢后，必須要反復洗滌，以去除未偶聯的配體。另外要用適當的方法封閉基質中未偶聯上配體的活性基團，也就是使基質失活，以免影響后面的親和層析分離。例如對于能結合氨基的活性基團，常用的方法是用2－乙醇胺、氨基乙烷等小分子處理。
配體與基質偶聯后，通常要測定配體的結合量以了解其與基質的偶聯情況，同時也可以推斷親和層析過程中對待分離的生物大分子吸附容量。配體結合量通常是用每毫升或每克基質結合的配體的量來表示。測定配體結合量的方法很多，下面簡單介紹幾種：
1.差量分析：根據加入配體的總量減去配體與基質偶聯后洗滌出來的量即可大致推算出配體的結合量。當配體可以用光譜法準確定量時，這種方法還是相當準確的。
2.直接光譜測量：對于能夠吸收250nm以上波長的配體，可以直接用光譜法測定與基質結合的配體的量。
3.凝膠溶解：通過適當的方法將凝膠溶解，如75 ?C下與酸或堿作用，而后直接用光譜法測量。
4.酸或酶的水解：用酸或酶作用，使得基質釋放出配體或配體的裂解物進行分析。
5.2,4,6－*磺酸鈉（TNBS）分析：利用TNBS與未結合配體和結合某些配體的基質作用呈現不同的顏色，可以計算出配體結合量
6.元素分析：如果配體中含有某種特別的元素，通過元素分析就可以確定配體結合量。
7.放射性分析法：偶聯中加入一定量帶有同位素的配體，通過放射性分析確定配體結合量，這是一種非常靈敏的方法。
影響配體結合量的因素很多，包括基質和配體的性質、基質的活化方法及條件、基質和配體偶聯反應的條件等等。例如通常溴化氰活化的基質的活性基團比環氧基活化的基質多，配體結合量可能較大。在用溴化氰活化時，增加溴化氰的量及反應的pH，可以增加基質上活化基團的量，從而增大配體結合量。偶聯過程中增加配體的量及增大反應的pH，也可以增大配體結合量。實驗中通常希望配體結合量較高，但應注意增加配體結合量應根據實際情況，還要考慮到其它因素的影響。因為提高配體的結合量不等價于提高親和吸附劑的吸附容量，配體結合量只是影響親和吸附劑吸附容量的一個因素，還有很多因素，如基質、配體以及待分離物質本身的性質，配體在基質的結合情況以及后面要介紹的實驗操作條件等都可能對親和吸附劑的吸附容量產生很大的影響。例如增大配體的結合量通常可以增加吸附容量，但有些增大配體結合量的條件可能會影響配體的結構，降低配體和待分離物質的親和力，這樣反而會降低親和吸附劑的吸附容量。實際影響親和吸附劑吸附容量的因素是非常復雜的，各種因素的影響都不是絕dui的，要獲得較高的吸附容量往往要考慮很多因素，并通過實驗摸索來選擇合適的條件。
目前已有多種活化的基質以及偶聯各種配體的親和吸附劑制成商品出售，可以省去基質活化，配體偶聯等復雜的步驟。使用方便，效果好，但一般價格昂貴。
親和吸附劑的再生和保存
親和吸附劑的再生就是指使用過的親和吸附劑，通過適當的方法使去除吸附在其基質和配體（主要是配體）上結合的雜質，使親和吸附劑恢復親和吸附能力。一般情況下，使用過的親和層析柱，用大量的洗脫液或較高濃度的鹽溶液洗滌，再用平衡液重新平衡即可再次使用。但在一些情況下，尤其是當待分離樣品組分比較復雜的時候，親和吸附劑可能會產生較嚴重的不可逆吸附，使親和吸附劑的吸附效率明顯下降。這時需要使用一些比較強烈的處理手段，使用高濃度的鹽溶液、尿素等變性劑或加入適當的非專一性蛋白酶。但如果配體是蛋白質等一些易于變性的物質，則應注意處理時不能改變配體的活性。
親和吸附劑的保存一般是加入0.01%的疊氮hua鈉，4℃下保存。也可以加入0.5%的醋酸洗必泰或0.05%的苯甲酸。應注意不要使親和吸附劑冰凍。
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